细胞活力测定：评估抑制剂对细胞增殖和存活能力的影响，是毒性初筛的基础指标。
膜完整性检测：通过检测乳酸脱氢酶（LDH）释放等，判断细胞膜是否受损。
细胞凋亡分析：检测Caspase-3/7活性、Annexin V染色等，定量分析程序性细胞死亡水平。
细胞周期分析：评估抑制剂是否干扰细胞正常的增殖周期，导致周期阻滞。
线粒体膜电位检测：使用JC-1等探针，评估线粒体功能状态，预测早期凋亡信号。
活性氧（ROS）水平检测：测定细胞内ROS积累，评估氧化应激诱导的毒性。
DNA损伤检测：通过彗星实验或γ-H2AX焦点分析，评估化合物对基因组的损伤潜力。
自噬流监测：检测LC3蛋白转化或自噬小体形成，评估抑制剂对自噬途径的影响。
细胞内钙离子浓度测定：使用Fluo-4 AM等荧光探针，监测细胞内钙稳态是否被破坏。
细胞形态学观察：通过高内涵成像，定量分析细胞形态、大小、核质比等变化。
肿瘤细胞系：如HeLa、HepG2、A549等，用于评估抑制剂对特定癌细胞的直接毒性。
原代细胞：如原代肝细胞、心肌细胞，更能反映抑制剂在体内对正常组织的潜在毒性。
干细胞：评估抑制剂对干细胞活力与分化的影响，预测发育毒性风险。
3D细胞球模型：模拟体内微环境，用于检测化合物在更接近生理条件下的渗透与毒性。
共培养体系：如肝细胞与库普弗细胞共培养，用于研究免疫介导的协同毒性效应。
斑马鱼胚胎：一种重要的体内预筛模型，可直观观察发育畸形和器官特异性毒性。
线虫模型：利用其短生命周期和JianCe遗传背景，进行快速的行为与寿命毒性筛查。
类器官：如肝类器官、肠类器官，提供具有复杂结构的体外模型，用于器官水平毒性评估。
血液成分：检测抑制剂对红细胞（溶血实验）或血小板的毒性作用。
酶学水平：直接检测化合物对关键代谢酶（如CYP450）的抑制活性，预测代谢性相互作用。
MTT/CCK-8法：基于线粒体脱氢酶活性，通过比色法间接反映细胞活力和增殖情况。
ATP含量检测：通过荧光素酶反应定量细胞内ATP水平，直接反映细胞的代谢活性状态。
流式细胞术：用于多参数分析细胞凋亡、周期、ROS及膜电位，实现单细胞水平的精准定量。
高内涵成像分析：自动化荧光显微成像结合图像分析，可同时获取多个形态与功能学毒性参数。
微流控芯片技术：在芯片上构建细胞培养单元，实现低剂量、高通量、动态的毒性筛选。
报告基因检测法：构建应激通路（如Nrf2、p53）的报告基因细胞系，快速检测通路特异性激活。
转录组学分析：通过RNA-seq筛选毒性相关基因表达谱变化，深入探索毒理机制。
代谢组学分析：检测细胞内小分子代谢物变化，揭示代谢紊乱等早期毒性事件。
实时细胞分析技术：通过阻抗法无标记、实时、动态监测细胞生长、形态和粘附变化。
斑马鱼表型筛选：在体视显微镜下系统观察并评分胚胎发育、心脏搏动、运动行为等表型异常。
酶标仪：具备吸光度、荧光和化学发光检测功能，用于读取各类微孔板实验信号。
流式细胞仪：配备多激光器和检测器，用于快速、多参数的细胞功能与死亡分析。
高内涵成像系统：自动化显微镜集成图像分析软件，实现高通量细胞形态与荧光定量。
实时无标记细胞分析仪：如RTCA系统，通过微电极阵列实时监测细胞阻抗变化。
激光共聚焦显微镜：用于高分辨率观察亚细胞结构变化及三维成像，如自噬小体形成。
液相色谱-质谱联用仪：用于代谢组学分析，精准鉴定和定量毒性暴露后的代谢物差异。
微流控芯片工作站：包含芯片操控、流体控制及在线检测模块，用于芯片上的毒性实验。
斑马鱼养殖与观察系统：包括恒温养殖设备、胚胎自动分选仪及体视荧光显微镜。
生物发光与荧光检测仪：高灵敏度检测报告基因信号（如萤光素酶）或ATP含量。
全自动样品处理工作站：实现细胞接种、化合物添加、染料孵育等步骤自动化，提高筛选通量和重复性。
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