血管内皮生长因子及其受体表达水平：定量检测肿瘤组织或循环中VEGF-A、VEGFR-2等关键因子的蛋白或mRNA表达，评估靶点丰度及变化。
微血管密度计数：通过CD31、CD34等内皮细胞标记物染色，在组织切片上定量单位面积内的血管数量，直接反映血管生成程度。
循环内皮细胞数量与活性：检测外周血中脱落的内皮细胞及其前体细胞的数量与凋亡比例，评估药物对血管内皮的系统性影响。
肿瘤组织缺氧标志物检测：检测缺氧诱导因子-1α、碳酸酐酶IX等蛋白表达，评估肿瘤内部缺氧状态，与耐药密切相关。
促血管生成因子谱分析：同时检测多种促血管生成因子（如FGF、PDGF、Angiopoietin-2）的表达变化，揭示旁路激活通路。
血管周细胞覆盖率评估：通过α-SMA等周细胞标记物与内皮标记物共染色，计算被周细胞覆盖的血管比例，反映血管成熟度与稳定性。
肿瘤细胞侵袭与迁移能力：通过Transwell等实验评估肿瘤细胞在药物压力下的运动能力变化，间接反映其促血管生成表型。
药物靶点基因突变分析：对VEGFR等相关基因进行测序，探查是否存在导致药物结合力下降的功能性突变。
下游信号通路磷酸化水平：检测PI3K/Akt、MAPK/ERK等VEGFR下游关键信号分子的磷酸化状态，评估通路是否持续激活。
肿瘤干细胞标志物表达：检测CD133、ALDH1等肿瘤干细胞标志物，评估其对缺氧微环境的适应及促血管生成潜能。
患者肿瘤组织石蜡切片：用于免疫组化、原位杂交等，进行MVD、蛋白表达定位等组织学分析。
患者新鲜或冻存肿瘤组织：用于蛋白质印迹、qPCR、ELISA等，提取蛋白或核酸进行定量分析。
患者外周血/血浆/血清样本：用于检测循环内皮细胞、循环肿瘤细胞及可溶性因子（如sVEGFR-2）。
患者来源的类器官模型：利用患者肿瘤细胞构建的三维培养模型，用于模拟体内微环境进行药敏测试。
细胞系异种移植模型组织：从CDX或PDX小鼠模型获取的肿瘤组织，用于多时间点的动态疗效与耐药评估。
转基因小鼠自发肿瘤组织：从特定基因工程小鼠模型获取的肿瘤，用于研究特定基因在耐药中的作用。
体外培养的血管内皮细胞：如人脐静脉内皮细胞，用于直接评估药物对增殖、成管、迁移等功能的影响。
体外培养的肿瘤细胞系：用于研究肿瘤细胞自身分泌的促血管生成因子及其对药物的反应。
共培养体系样本：如肿瘤细胞与内皮细胞共培养上清或细胞，用于研究细胞间相互作用对耐药的影响。
活体成像数据：包括小动物超声、荧光显微成像等动态影像数据，用于无创评估血管结构与功能变化。
免疫组织化学与免疫荧光：在组织切片上进行特异性抗原染色，用于定位和半定量分析蛋白表达及共定位。
酶联免疫吸附测定：利用抗原-抗体反应定量检测血清、血浆或组织裂解液中的特定可溶性蛋白浓度。
实时荧光定量PCR：通过荧光信号扩增曲线，精确测定特定基因mRNA的表达水平，灵敏度高。
蛋白质印迹法：通过电泳分离和抗体杂交，检测特定蛋白及其修饰（如磷酸化）的表达量与分子量。
流式细胞术：对悬浮细胞（如循环内皮细胞）进行多参数快速分析，统计数量并检测表面标志物。
小动物活体荧光/生物发光成像：通过报告基因或荧光染料，无创、动态监测活体动物体内肿瘤生长及血管分布。
微血管超声成像：使用高频超声探头，无创评估肿瘤内血流速度、血管密度等血流动力学参数。
内皮细胞成管实验：在Matrigel基质胶上培养内皮细胞，观察其连接形成管状结构的能力，评估血管生成潜能。
下一代测序技术：对肿瘤组织进行全外显子组或转录组测序，全面分析基因突变、拷贝数变异及表达谱改变。
激光捕获显微切割技术：从复杂组织切片中精确分离特定细胞群（如血管周围细胞），用于后续分子分析。
病理切片扫描与分析系统：全自动扫描显微镜配合图像分析软件，实现组织切片数字化和高通量定量分析。
酶标仪：用于读取ELISA、MTT等实验的吸光度或荧光值，进行批量样本的快速定量检测。
实时荧光定量PCR仪：提供精确的温度控制和荧光检测模块，用于基因表达水平的绝对或相对定量。
化学发光/荧光成像系统：用于捕获蛋白质印迹膜、凝胶等样本的化学发光或荧光信号，并进行定量分析。
流式细胞仪：配备多激光器和检测器，可同时对单个细胞的多个物理和生化特征进行高速分析分选。
小动物活体光学成像系统：配备高灵敏度CCD相机和特定滤光片，用于小动物体内荧光和生物发光信号的二维或三维成像。
高频小动物超声成像仪：专为小动物设计的高分辨率超声设备，可进行血流成像和定量分析。
激光共聚焦显微镜：利用激光扫描和针孔技术，获得高分辨率、高对比度的三维细胞或组织图像，用于共定位研究。
下一代测序平台：如Illumina测序仪，能够实现大规模、高通量的DNA或RNA序列测定。
激光捕获显微切割系统：结合显微镜和激光技术，从冰冻或石蜡切片中精确分离并收集目标细胞或区域。
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