蛋白质二级结构含量分析:通过CD光谱计算α-螺旋、β-折叠、β-转角和无规卷曲等二级结构组分的相对百分比。
蛋白质折叠与去折叠研究:监测蛋白质在不同温度或变性剂浓度下的构象变化,研究其折叠稳定性。
蛋白质与小分子相互作用:检测药物、配体或抑制剂与蛋白质结合后引起的构象变化。
核酸手性结构分析:研究DNA/RNA的A型、B型、Z型构象及其在溶液中的结构转变。
多肽构象鉴定:确定合成多肽或天然多肽在溶液中的主导二级结构。
蛋白质热稳定性测定:通过监测CD信号随温度的变化,计算蛋白质的熔解温度(Tm)。
手性化合物绝对构型确定:通过与已知标准谱图对比,推断小分子手性中心的绝对构型。
蛋白质聚集早期检测:利用远紫外CD光谱的异常变化,预警蛋白质的聚集倾向。
膜蛋白结构研究:在模拟膜环境(如脂质体)中分析膜蛋白的二级结构。
酶催化过程中的构象动力学:通过停流CD技术,实时监测酶与底物结合及催化过程中的快速构象变化。
远紫外区(170-250 nm):此波段主要反映肽键的n-π*和π-π*跃迁,是分析蛋白质和多肽二级结构的核心区域。
近紫外区(250-350 nm):此波段信号来源于芳香族氨基酸(色氨酸、酪氨酸、苯丙氨酸)和二硫键的手性环境,用于研究三级结构。
可见光区(350-700 nm):主要用于检测含有发色团(如血红素、辅酶、染料)的蛋白质或手性金属配合物。
真空紫外区(低于170 nm):可提供更丰富的电子跃迁信息,但需在真空或惰性气体环境下测量,技术要求高。
温度范围(-10°C 至 130°C):通过配备温控装置,可在宽温度范围内研究样品的变性与复性过程。
浓度范围(μg/mL 至 mg/mL):根据样品和池径不同,所需样品浓度差异很大,通常远紫外区需要较高浓度。
时间尺度(毫秒至小时):既可进行稳态扫描,也可通过停流附件进行快速动力学监测。
溶液环境(pH 2-12):研究不同酸碱条件下生物大分子的构象稳定性与变化。
变性剂浓度梯度:通过监测不同浓度尿素或盐酸胍下的CD信号,绘制蛋白质去折叠曲线。
压力变化范围:利用高压CD池,研究高压对蛋白质等生物大分子结构的影响。
稳态波长扫描:在固定温度和其他条件下,连续改变入射光波长并记录椭圆度值,获得完整的CD光谱。
热变性扫描:在固定波长(通常为222 nm或218 nm)下,连续改变样品温度,监测CD信号变化以研究热稳定性。
化学变性滴定:逐步向样品中加入化学变性剂,在固定波长下监测CD信号变化,绘制去折叠曲线。
时间扫描动力学:在固定波长和温度下,长时间监测CD信号随时间的变化,用于研究慢速构象变化或聚集过程。
停流快速混合技术:将样品与反应物快速混合后瞬间进入光路,用于监测毫秒到秒级的快速构象变化动力学。
滴定实验:向固定浓度的蛋白质溶液中逐步加入配体或小分子,通过CD光谱变化研究结合常数和结合引起的构象变化。
差示扫描量热法联用:将CD信号与热流信号同步测量,同时获得构象变化与热力学参数。
浓度依赖扫描:测量不同浓度样品的光谱,以检查并排除因聚集或分子间相互作用导致的光谱假象。
磁场诱导CD:在外加磁场下进行测量,用于研究具有磁各向异性的手性体系。
振动圆二色光谱扩展:结合红外光源,探测分子振动能级的手性差异,作为电子CD的补充。
氙灯或氘灯光源:提供稳定的高强度紫外-可见连续光谱,是CD光谱仪的核心光源。
单色仪:将复合光色散并选择特定波长的单色光出射,其分辨率和杂散光水平直接影响数据质量。
光弹性调制器:核心光学调制器件,以高频(通常50 kHz)在左旋和右旋圆偏振光之间交替调制入射光。
样品室与温控单元:容纳样品池并提供精确的温度控制,温度范围和控制精度是关键指标。
石英样品池:根据测量波段(远紫外/近紫外)和所需光程(0.01 mm 至 10 mm)选择不同规格的高质量石英池。
光电倍增管检测器:将经过样品调制后的光信号转换为电信号,要求在高紫外区具有高灵敏度和低噪声。
锁相放大器:用于解调PEM频率下的微弱CD信号,极大提高信噪比。
氮气吹扫系统:用于驱除光路中的氧气,防止臭氧生成并降低远紫外区(低于190 nm)的光吸收干扰。
停流混合附件:由驱动 syringe、混合室和触发装置组成,用于快速动力学研究。
数据处理与分析软件:集成光谱采集、平滑、扣除本底、二级结构拟合(如CONTIN、SELCON算法)等多种功能。
1、咨询:提品资料(说明书、规格书等)
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8、寄送报告原件
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