TLR2/1异源二聚体激活检测:评估TLR2与TLR1结合后对三酰脂肽(如Pam3CSK4)的响应,反映对革兰氏阳性菌的识别能力。
TLR2/6异源二聚体激活检测:检测TLR2与TLR6结合后对二酰脂肽(如Pam2CSK4)的响应,指示对支原体等病原体的免疫感应。
TLR3激活检测:通过检测细胞对双链RNA类似物(如poly(I:C)的响应,评估病毒核酸识别通路的状态。
TLR4激活检测:核心检测项目,通过脂多糖(LPS)刺激,评估经典病原相关分子模式识别及MyD88/TRIF信号通路启动。
TLR5激活检测:利用鞭毛蛋白刺激,检测细胞对细菌鞭毛蛋白的识别和固有免疫激活水平。
TLR7激活检测:通过单链RNA或咪唑喹啉类化合物(如R848)刺激,评估对病毒单链RNA的胞内识别能力。
TLR8激活检测:检测对单链RNA及特定小分子化合物的响应,在髓系细胞中尤为重要。
TLR9激活检测:使用含未甲基化CpG基序的寡核苷酸(CpG ODN)刺激,评估对细菌或病毒DNA的识别。
TLR10激活检测:功能尚不完全明确,通常通过配体筛选或报告基因系统评估其潜在的激活或抑制调节功能。
下游信号分子磷酸化检测:关键验证项目,通过检测NF-κB、IRF3/7、MAPK等通路关键蛋白的磷酸化水平,确认TLR信号传导效率。
人外周血单个核细胞:最常用的原代细胞模型,可综合反映个体TLR系统的整体反应性。
小鼠脾细胞:动物实验研究中的主要样本来源,用于评估小鼠模型中的TLR功能。
永生化巨噬细胞系:如RAW264.7、THP-1细胞,用于标准化、高通量的TLR配体筛选和机制研究。
树突状细胞:包括髓样和浆细胞样树突状细胞,是连接固有免疫与适应性免疫的关键检测对象。
特定基因编辑细胞株:如TLR基因敲除、过表达或报告基因稳转细胞株,用于特异性通路研究。
临床组织样本:从炎症、感染或肿瘤组织中分离的免疫细胞,用于疾病相关的TLR功能分析。
药物或化合物库:筛选具有TLR激动剂或拮抗剂活性的潜在药物先导化合物。
疫苗佐剂评价:评估各类候选佐剂(如铝盐、MPL、CpG)通过特定TLR激活免疫反应的效果。
生物制剂质量控制:检测治疗性蛋白、核酸药物或疫苗中是否存在意外的TLR激活杂质(如内毒素)。
模式识别受体交叉对话研究:研究TLR与其他受体(如NLR、RLR)协同或拮抗作用的细胞模型。
酶联免疫吸附试验:定量检测TLR激活后细胞培养上清中的细胞因子(如TNF-α, IL-6, IL-1β)分泌水平。
荧光素酶报告基因法:将NF-κB或IRF应答元件驱动荧光素酶基因的质粒转染细胞,通过发光信号定量TLR通路活性。
流式细胞术:通过胞内染色检测信号蛋白磷酸化,或表面染色检测共刺激分子(如CD80/CD86)的表达上调。
蛋白质免疫印迹:经典方法,用于确认下游信号通路蛋白(如IkB-α降解,p-IRF3)的表达与修饰变化。
定量实时聚合酶链反应:检测TLR激活后特定靶基因(如趋化因子、干扰素刺激基因)mRNA的转录水平变化。
免疫荧光/共聚焦显微镜技术:可视化观察NF-κB等转录因子从胞浆到胞核的转位过程。
电泳迁移率变动分析:用于直接检测转录因子(如NF-κB)与DNA探针的结合活性,验证其核内功能。
磷酸化流式细胞术:基于流式细胞术的高通量方法,可同时分析单细胞水平多条信号通路的磷酸化事件。
细胞表面标志物多重分析:利用多色流式或Luminex技术,同时分析多种细胞表面活化标志物的表达谱。
小干扰RNA/CRISPR敲低技术:通过敲低特定TLR或接头蛋白基因,结合功能实验进行反向验证和机制研究。
酶标仪:用于读取ELISA、报告基因实验(化学发光/荧光)以及细胞活性检测(如CCK-8)的光密度或发光/荧光值。
流式细胞仪:核心设备之一,用于分析细胞表面/内蛋白表达、磷酸化状态及细胞亚群分类的多参数检测。
实时荧光定量PCR仪:精确量化TLR信号通路下游效应基因转录水平变化的必备仪器。
蛋白电泳及转印系统:包括电泳槽、电源和湿转/半干转印仪,用于Western Blot样本制备。
化学发光成像系统:用于捕获Western Blot、EMSA等实验中化学发光或荧光信号,进行蛋白条带定量分析。
共聚焦显微镜:提供高分辨率图像,用于亚细胞定位研究,如观察信号分子在TLR激活后的转位过程。
多功能微孔板检测平台:可集成光吸收、荧光、发光、时间分辨荧光等多种检测模式,适合高通量筛选。
Luminex多重液相芯片分析系统:可同时定量检测一份样本中数十种细胞因子或磷酸化蛋白,实现多因子平行分析。
细胞培养箱
超净工作台/生物安全柜:为所有涉及活细胞的操作提供无菌环境,保障样本不受污染和操作者安全。
1、咨询:提品资料(说明书、规格书等)
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