DNA样本片段化:通过物理或酶学方法将基因组DNA随机打断成特定长度范围(如150-800 bp)的片段,是文库构建的第一步。
末端修复与磷酸化:将片段化产生的粘性末端修复为平末端,并在5‘端添加磷酸基团,为后续接头连接做准备。
3‘端加“A”尾:在DNA片段的3’端添加一个腺嘌呤脱氧核苷酸,用于与接头上的“T”突出端进行互补连接,提高连接效率与特异性。
测序接头连接:将含有测序引物结合位点、索引(Barcode)序列和流动池锚定位点的双链接头连接到DNA片段两端。
接头连接产物纯化:使用磁珠或柱纯化法去除未连接的游离接头、接头二聚体及酶等杂质,富集目标片段。
文库片段大小选择:通过磁珠分选或切胶回收等方式,筛选出特定长度范围的文库片段,以确保测序数据的均一性。
文库PCR扩增:使用与接头序列互补的通用引物进行有限循环数的PCR,以富集带有完整接头的文库片段并引入样本索引。
扩增后文库纯化:对PCR产物进行纯化,去除引物二聚体、引物及酶等成分,得到高纯度的最终文库。
文库质量浓度检测:使用荧光定量或生物分析仪等方法精确测定文库的浓度与片段分布,确保其符合上机测序要求。
文库均一化与池化:将多个完成质检的个体文库按计算好的比例混合,形成可用于单次测序运行的混合文库池。
全基因组DNA:适用于人类、动物、植物、微生物等各类生物体的全基因组重测序或从头测序研究。
目标区域捕获DNA:针对外显子组、特定基因 panel 或自定义基因组区域进行富集后的文库构建。
总RNA:适用于转录组测序,需先进行mRNA富集或rRNA去除,再反转录为cDNA进行建库。
小RNA:专门针对miRNA、siRNA等短链非编码RNA(~18-30 nt)的分离与建库。
单细胞悬液:适用于基于液滴或孔板的单细胞分离技术,进行极低起始量(pg级)的DNA或RNA建库。
循环肿瘤DNA:针对血浆中痕量的游离DNA进行超灵敏建库,用于无创产前检测或肿瘤液体活检。
染色质免疫共沉淀产物:适用于ChIP-seq研究,对与特定蛋白质结合的DNA片段进行建库。
甲基化DNA:对经过亚硫酸氢盐转化或酶学处理的DNA进行建库,用于全基因组或靶向甲基化测序。
降解或FFPE样本DNA:针对福尔马林固定石蜡包埋组织等降解严重的DNA样本进行优化的建库流程。
宏基因组DNA:直接对环境样本(如土壤、水体、肠道内容物)中的混合微生物总DNA进行建库分析。
超声打断法:利用聚焦超声的物理剪切力将DNA随机打断,片段分布均一,适用于多种样本类型。
转座酶法:利用Tn5转座酶同时完成DNA片段化与接头连接,步骤简化,建库速度快,适用于全基因组测序。
酶切片段化法:使用非特异性核酸内切酶或限制性内切酶组合进行DNA消化,成本较低。
mRNA polyA尾捕获法:使用 oligo-dT 磁珠特异性地富集真核生物带polyA尾的mRNA,用于RNA-seq。
rRNA去除法:使用探针杂交或酶消化法选择性去除占总RNA绝大部分的rRNA,保留其他RNA类型。
链特异性建库法:在反转录或连接过程中引入链特异性标记,使得测序数据能区分转录本来源链。
多重退火环状循环扩增法:一种基于滚环扩增的全基因组扩增技术,常用于极低起始量或单细胞DNA扩增。
模板转换法:在反转录过程中引入特殊引物实现cDNA末端均一化,是许多单细胞RNA建库技术的核心。
杂交捕获法:使用与目标区域互补的生物素标记探针进行液相杂交,通过链霉亲和素磁珠捕获富集目标序列。
磁珠纯化与分选法:基于SPRI(固相可逆固定化)磁珠技术,广泛应用于建库各步骤的纯化与片段大小选择。
Covaris超声破碎仪:通过自适应聚焦声学技术实现DNA的可控、均一片段化,是高质量文库构建的金标准设备之一。
Qubit荧光定量仪:使用荧光染料特异性结合核酸,精确测定低浓度文库的浓度,灵敏度远高于紫外分光光度计。
Agilent Bioanalyzer/Tapestation:基于微流控芯片的电泳系统,用于精确分析文库的片段大小分布与完整性。
PCR仪:用于文库的末端修复、加A尾、接头连接反应以及后续的PCR扩增步骤,要求温控精准。
磁力架:与SPRI磁珠配合使用,用于核酸的纯化、分选与清洗操作,是建库流程中的基础工具。
微量分光光度计:用于快速评估核酸样本的纯度(A260/A280比值)与浓度,但灵敏度有限。
离心浓缩仪:通过真空离心或气流加热方式快速浓缩低体积的文库溶液,便于后续步骤操作。
自动化液体处理工作站:如Hamilton、Tecan等品牌设备,可实现高通量、标准化的文库构建流程,减少人为误差。
恒温金属浴/干浴器:为酶学反应(如末端修复、连接)提供稳定且均匀的温度环境。
微量核酸提取仪:用于从各类原始样本(血液、组织、细胞)中自动化提取高质量核酸作为建库起始材料。
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